Réaction de Feulgen

La réaction de Feulgen est une méthode permettant de déterminer la présence d'ADN dans le noyau cellulaire, développée en 1924 par le biologiste allemand Robert Feulgen. Cette méthode est l’une des méthodes les plus courantes et les plus précises pour déterminer la présence d’ADN dans les cellules.

La procédure de réaction de Feulgen commence par la préparation d’une coupe de tissu, qui est ensuite hydrolysée avec de l’acide chlorhydrique dilué. Cela conduit à une dénaturation des protéines et à une hydrolyse de l’ADN dans le noyau cellulaire. La coupe est ensuite traitée avec le réactif de Schiff, qui interagit avec les désoxyribonucléotides restant dans le noyau cellulaire, formant un complexe stable.

À la suite de cette réaction, les désoxyribonucléotides du noyau cellulaire prennent une couleur violet foncé. Dans le même temps, la couleur de la tache dépend de la quantité d’ADN présente dans la cellule.

La réaction de Feulgen a de nombreuses applications en recherche biologique. Il peut être utilisé pour déterminer la teneur en ADN de divers types de cellules, ainsi que pour étudier les caractéristiques du cycle cellulaire et les mutations de l'ADN.

En outre, la méthode de réaction de Feulgen constitue un outil important pour diagnostiquer les maladies associées à des troubles de l'ADN, telles que le cancer et les troubles génétiques.

Ainsi, la réaction de Feulgen est une méthode importante en recherche biologique, qui permet de déterminer la présence d'ADN dans les cellules et d'utiliser ces informations pour diagnostiquer et étudier des maladies.

La réaction de Feulgen est l'une des méthodes les plus courantes pour déterminer la présence d'ADN dans les cellules. La méthode a été développée par le biologiste allemand Robert Feulgen en 1914 et reste un outil important pour la recherche en biologie cellulaire.

L'idée de base de la réaction de Feulgen est d'utiliser le réactif de Schiff pour colorer l'ADN du noyau cellulaire. Pour ce faire, avant de commencer l'expérience, le tissu est coupé et soumis à une hydrolyse avec de l'acide chlorhydrique dilué. Cette étape est nécessaire pour éliminer les principaux composants protéiques susceptibles d’interférer avec la détection de l’ADN.

Ensuite, le tissu est traité avec le réactif de Schiff, qui contient de la fuchsine ou ses dérivés. En présence d'ADN, le réactif de Schiff forme un complexe stable avec des molécules d'ADN filamenteuses, ce qui aboutit finalement à la formation d'une couleur violette.

Le degré de couleur dépend de la quantité d'ADN dans la cellule, ce qui rend la réaction de Feulgen sensible et précise et permet de l'utiliser pour une analyse quantitative de l'ADN.

La réaction de Feulgen est largement utilisée en médecine, en biologie et en génétique pour déterminer la teneur en ADN de divers types de cellules. Cette méthode peut être utilisée, par exemple, pour étudier les tumeurs malignes, où des changements dans la quantité d'ADN peuvent indiquer la présence de cellules cancéreuses. Il peut également être utile pour étudier le génome de divers organismes et détecter des mutations et des changements génétiques.

Ainsi, la réaction de Feulgen est un outil important pour l'étude de la biologie cellulaire et de la génétique, qui permet de déterminer la présence et la quantité d'ADN dans une cellule. En raison de sa sensibilité et de sa précision, cette méthode continue d’être populaire parmi les chercheurs du monde entier.

Réaction de Feulgen pour déterminer l'ADN dans les cellules. La substance Fölgegens est une solution composée de plusieurs composants. Le but ultime est de détecter et de mesurer la quantité d’ADN dans les tissus. La méthode de base pour la préparation cellulaire est basée sur la procédure de fixation décrite dans la section 3.3.1.

Lorsqu’un échantillon de tissu est ouvert et dilué avec une grande quantité d’acide, il décompose le collagène présent dans la matrice tissulaire pour libérer des cellules pouvant être utilisées pour l’analyse. Certaines études évaluent la fixation des tissus par microscopie optique, d'autres évaluent la présence de viabilité cellulaire dans le matériau après l'effet fixateur du médicament. Enfin, dans le cas de la cryohistologie, les cellules sont fixées dans des conditions subnucléaires telles que le freeze-scanning.

Après fixation, les cellules non fixées sont colorées avec des réactifs de Schiff au détergent acide. Une coloration à l'iode ou au bleu de toluidine peut accompagner la réaction de Föhl